产品货号:
WH0018
中文名称:
广谱基因组DNA提取试剂盒(离心吸附柱法)
英文名称:
Extraction kit for genomic DNA from blood/cell/tissue
产品规格:
50次|200次
发货周期:
1~3天
产品价格:
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本试剂盒适用于小体系全血(≤1ml)、培养细胞和动物组织等基因组DNA的广谱性提取试剂盒。试剂盒采用了独特的细胞裂解体系,使蛋白变性,结合硅胶膜特异吸附核酸的原理,快速纯化得到基因组DNA。使用本试剂盒纯化所得的DNA无蛋白、核酸酶污染,可直接进行PCR、酶切和Southern杂交等实验操作。
产品特点:
·简单快速:1h内即可获得超纯的基因组DNA。
·广泛:适用于血液、多种动物细胞和动物组织等。
·超纯:获得的DNA纯度高,可直接用于PCR、酶切、杂交等分子生物学实验。
材料用量和纯化核酸得率:
组织匀浆以及裂解充分图例:
组织取样量图例:
试剂盒组成:
保存条件:室温(15-25℃)干燥条件下,可保存12个月,更长时间的保存可置于2-8℃。2-8℃保存条件下,若溶液产生沉淀,使用前应将试剂盒内的溶液在室温放置一段时间,必要时可在37℃水浴中预热10min,以溶解沉淀。
选配试剂:红细胞裂解液(Red Cell Lysis Buffer目录号:WH0229);RNase A(100mg/ml)(目录号:WH0217)
注意事项:(请务必在使用本试剂盒之前阅读此注意事项)
1.第一次使用前应按照试剂瓶标签的说明先在缓冲液GD和漂洗液PW中加入无水乙醇。
2.样品应避免反复冻融,否则会导致提取的DNA片段较小且提取量也下降。
3.若缓冲液GA或GB中有沉淀,可在37℃水浴中重新溶解,摇匀后使用。
4.所有离心步骤均为使用台式离心机,室温下离心。
使用方法:
使用前请先在缓冲液GD和漂洗液PW中加入无水乙醇,加入体积请参照瓶上的标签。
1.处理材料
a.如提取材料为血液,可直接使用200μl新鲜、冷冻或加入各种抗凝剂的血液,不足200μl可加缓冲液GA补足;
注意:如需处理更大体积血液,如300 μl-1 ml,应按以下步骤操作:在样品中加入3倍体积红细胞裂解液(例如,300 μl血液加入900 μl红细胞裂解液),颠倒混匀,室温放置5 min,期间再颠倒混匀几次。10000rpm(~11500×g)离心1 min(若离心机最高转速不允许,可3000 rpm(~3400×g)离心5 min),吸去上清,留下白细胞沉淀,加200μl缓冲液GA,振荡至彻底混匀。
红细胞裂解液本公司另外有售(目录号:WH0229),可根据需要来决定购买。
b.如果处理血样为禽类、鸟类、两栖类或更低级生物的抗凝血液,其红细胞为有核细胞,因此处理量5-20 μl,可加缓冲液GA补足200μl后进行下面的裂解步骤。
c.贴壁培养的细胞应先处理为细胞悬液,然后10000rpm(~11,200×g)离心1 min,倒尽上清,加200μl缓冲液GA,振荡至彻底悬浮;
d.动物组织(脾组织用量应少10 mg)应先打碎处理为细胞悬液,然后10,000rpm(~11,200×g)离心1 min,倒尽上清,加200μl缓冲液GA,振荡至彻底悬浮。
注意:如果需要去除RNA,可加入4 μl RNaseA(100mg/ml)溶液(客户自备,目录号:WH0217),振荡15 sec,室温放置5 min。
2.加入20 μl Proteinase K溶液,混匀。
a.提取血液基因组时,只需加入Proteinase K混匀,即可继续进行下一步。
b.提取细胞基因组时,只需加入Proteinase K混匀,即可继续进行下一步。
c.提取组织基因组时,加入Proteinase K混匀后,在56℃放置,直至组织溶解,简短离心以去除管盖内壁的水珠,再进行下一步骤。
注意:不同组织裂解时间不同,通常需1-3 h即可完成(鼠尾需要消化过夜)。不会影响后续操作。每小时颠倒混合样品2-3次,用水浴振荡器也可。
3.加入200μl缓冲液GB,充分颠倒混匀,70℃放置10min,溶液应变清亮,简短离心以去除管盖内壁的水珠。
注意:加入缓冲液GB时可能会产生白色沉淀,一般70℃放置时会消失,不会影响后续实验。如溶液未变清亮,说明细胞裂解不彻底,可能导致提取DNA量少和提取出的DNA不纯。当血液体积≤200μl且没有采用红细胞裂解处理,或是样本储存条件不佳,水浴后颜色可能为深褐色,注意溶液中没有团块等沉淀。
4.加人200μl无水乙醇,充分振荡混匀15 sec,此时可能会出现絮状沉淀,简短离心以去除管盖内壁的水珠。
5.将上一步所得溶液和絮状沉淀都加入一个吸附柱CB3中(吸附柱放入收集管中),12000rpm (~13400×g)离心30 sec,倒掉废液,将吸附柱CB3放回收集管中。
6.向吸附柱CB3中加入500 μl缓冲液GD (使用前请先检查是否已加入无水乙醇),12,000rpm (~13400×g)离心30 sec,倒掉废液,将吸附柱CB3放入收集管中。
7.向吸附柱CB3中加入600 μl漂洗液PW(使用前请先检查是否已加入无水乙醇),12000rpm (~13400×g)离心30 sec,倒掉废液,将吸附柱CB3放入收集管中。
8.重复操作步骤7。
9.将吸附柱CB3放回收集管中,12000rpm(~13400×g)离心2 min,倒掉废液。将吸附柱CB3置于室温放置数分钟,以彻底晾干吸附材料中残余的漂洗液。
注意:这一步的目的是将吸附柱中残余的漂洗液去除,漂洗液中乙醇的残留会影响后续的酶反应(酶切、PCR等)实验。
10.将吸附柱CB3转入一个干净的离心管中,向吸附膜的中间部位悬空滴加50-200μl洗脱缓冲液TE,室温放置2-5 min,12000rpm (~13400×g)离心2 min,将溶液收集到离心管中。
注意:洗脱缓冲液体积不应少于50 μl,体积过小影响回收效率。洗脱液的pH值对于洗脱效率有很大影响。若用ddH2O做洗脱液应保证其pH值在7.0-8.5范围内,pH值低于7.0会降低洗脱效率;且DNA产物应保存在-20℃,以防DNA降解。为增加基因组DNA的得率,可将离心得到的溶液再加入吸附柱CB3中,室温放置2 min,12000rpm(~13400×g )离心2 min。
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产品特点:
·简单快速:1h内即可获得超纯的基因组DNA。
·广泛:适用于血液、多种动物细胞和动物组织等。
·超纯:获得的DNA纯度高,可直接用于PCR、酶切、杂交等分子生物学实验。
材料用量和纯化核酸得率:
样本 | 处理量 | DNA得率(μg) |
哺乳动物全血 | 100~500μl | 3~10 |
禽类、两栖类全血 | 5μl | 5~10 |
培养细胞 | 106~107Cells | 5~30 |
动物组织 | 30mg | 10~30 |
小鼠尾 | 1.2cm(尖部) | 10~25 |
大鼠尾 | 0.6cm(尖部) | 20~40 |
组织匀浆以及裂解充分图例:
组织取样量图例:
试剂盒组成:
组分 | 50T | 200T |
缓冲液GA | 15ml | 50 ml |
缓冲液GB | 15ml | 52 ml |
缓冲液GD | 13 ml | 50 ml |
漂洗液PW | 15ml | 50 ml |
洗脱缓冲液TE | 15ml | 60 ml |
Proteinase K | 1 ml | 4×1 ml |
吸附柱CB3 | 50个 | 200个 |
收集管(2 ml) | 50个 | 200个 |
保存条件:室温(15-25℃)干燥条件下,可保存12个月,更长时间的保存可置于2-8℃。2-8℃保存条件下,若溶液产生沉淀,使用前应将试剂盒内的溶液在室温放置一段时间,必要时可在37℃水浴中预热10min,以溶解沉淀。
选配试剂:红细胞裂解液(Red Cell Lysis Buffer目录号:WH0229);RNase A(100mg/ml)(目录号:WH0217)
注意事项:(请务必在使用本试剂盒之前阅读此注意事项)
1.第一次使用前应按照试剂瓶标签的说明先在缓冲液GD和漂洗液PW中加入无水乙醇。
2.样品应避免反复冻融,否则会导致提取的DNA片段较小且提取量也下降。
3.若缓冲液GA或GB中有沉淀,可在37℃水浴中重新溶解,摇匀后使用。
4.所有离心步骤均为使用台式离心机,室温下离心。
使用方法:
使用前请先在缓冲液GD和漂洗液PW中加入无水乙醇,加入体积请参照瓶上的标签。
1.处理材料
a.如提取材料为血液,可直接使用200μl新鲜、冷冻或加入各种抗凝剂的血液,不足200μl可加缓冲液GA补足;
注意:如需处理更大体积血液,如300 μl-1 ml,应按以下步骤操作:在样品中加入3倍体积红细胞裂解液(例如,300 μl血液加入900 μl红细胞裂解液),颠倒混匀,室温放置5 min,期间再颠倒混匀几次。10000rpm(~11500×g)离心1 min(若离心机最高转速不允许,可3000 rpm(~3400×g)离心5 min),吸去上清,留下白细胞沉淀,加200μl缓冲液GA,振荡至彻底混匀。
红细胞裂解液本公司另外有售(目录号:WH0229),可根据需要来决定购买。
b.如果处理血样为禽类、鸟类、两栖类或更低级生物的抗凝血液,其红细胞为有核细胞,因此处理量5-20 μl,可加缓冲液GA补足200μl后进行下面的裂解步骤。
c.贴壁培养的细胞应先处理为细胞悬液,然后10000rpm(~11,200×g)离心1 min,倒尽上清,加200μl缓冲液GA,振荡至彻底悬浮;
d.动物组织(脾组织用量应少10 mg)应先打碎处理为细胞悬液,然后10,000rpm(~11,200×g)离心1 min,倒尽上清,加200μl缓冲液GA,振荡至彻底悬浮。
注意:如果需要去除RNA,可加入4 μl RNaseA(100mg/ml)溶液(客户自备,目录号:WH0217),振荡15 sec,室温放置5 min。
2.加入20 μl Proteinase K溶液,混匀。
a.提取血液基因组时,只需加入Proteinase K混匀,即可继续进行下一步。
b.提取细胞基因组时,只需加入Proteinase K混匀,即可继续进行下一步。
c.提取组织基因组时,加入Proteinase K混匀后,在56℃放置,直至组织溶解,简短离心以去除管盖内壁的水珠,再进行下一步骤。
注意:不同组织裂解时间不同,通常需1-3 h即可完成(鼠尾需要消化过夜)。不会影响后续操作。每小时颠倒混合样品2-3次,用水浴振荡器也可。
3.加入200μl缓冲液GB,充分颠倒混匀,70℃放置10min,溶液应变清亮,简短离心以去除管盖内壁的水珠。
注意:加入缓冲液GB时可能会产生白色沉淀,一般70℃放置时会消失,不会影响后续实验。如溶液未变清亮,说明细胞裂解不彻底,可能导致提取DNA量少和提取出的DNA不纯。当血液体积≤200μl且没有采用红细胞裂解处理,或是样本储存条件不佳,水浴后颜色可能为深褐色,注意溶液中没有团块等沉淀。
4.加人200μl无水乙醇,充分振荡混匀15 sec,此时可能会出现絮状沉淀,简短离心以去除管盖内壁的水珠。
5.将上一步所得溶液和絮状沉淀都加入一个吸附柱CB3中(吸附柱放入收集管中),12000rpm (~13400×g)离心30 sec,倒掉废液,将吸附柱CB3放回收集管中。
6.向吸附柱CB3中加入500 μl缓冲液GD (使用前请先检查是否已加入无水乙醇),12,000rpm (~13400×g)离心30 sec,倒掉废液,将吸附柱CB3放入收集管中。
7.向吸附柱CB3中加入600 μl漂洗液PW(使用前请先检查是否已加入无水乙醇),12000rpm (~13400×g)离心30 sec,倒掉废液,将吸附柱CB3放入收集管中。
8.重复操作步骤7。
9.将吸附柱CB3放回收集管中,12000rpm(~13400×g)离心2 min,倒掉废液。将吸附柱CB3置于室温放置数分钟,以彻底晾干吸附材料中残余的漂洗液。
注意:这一步的目的是将吸附柱中残余的漂洗液去除,漂洗液中乙醇的残留会影响后续的酶反应(酶切、PCR等)实验。
10.将吸附柱CB3转入一个干净的离心管中,向吸附膜的中间部位悬空滴加50-200μl洗脱缓冲液TE,室温放置2-5 min,12000rpm (~13400×g)离心2 min,将溶液收集到离心管中。
注意:洗脱缓冲液体积不应少于50 μl,体积过小影响回收效率。洗脱液的pH值对于洗脱效率有很大影响。若用ddH2O做洗脱液应保证其pH值在7.0-8.5范围内,pH值低于7.0会降低洗脱效率;且DNA产物应保存在-20℃,以防DNA降解。为增加基因组DNA的得率,可将离心得到的溶液再加入吸附柱CB3中,室温放置2 min,12000rpm(~13400×g )离心2 min。
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